Produits | Utilisations | Protocoles | |
Extrait d'acide cyanhydrique |
Blocage de la respiration mitochondriale - ExAO |
Découper des feuilles de Laurier-Cerise (Prunus Lauro-Cerasus) en morceaux dans un mortier Broyer les feuilles dans un peu d'eau physiologique ou de tampon de respiration pour mitochondries Filtrer l'extrait qui contient de l'acide cyanhydrique libéré par hydrolyse et le broyage | |
Agar-agar |
Remplissage des boites de pétri pour immunodiffusion (ex. Ouchterlony) |
Pour 100 ml de gélose (10 boites) Peser 0.8g d'agar-agar. Mélanger dans 100 ml d'eau distillée portée à ébullition. Attendre que la solution reprenne une température proche des 50° pour couler 10 ml de gélose dans chaque boites. | |
Solution d'Albumine
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Analyse de la matière organique - digestion des protides - Électrophorèse des protéines |
Diluer 1 blanc d'œuf dans 200 ml d'eau distillée. Chauffer doucement en agitant constamment ; vers 70°C, la solution prend un aspect laiteux par coagulation de l'ovalbumine. Arrêter aussitôt le chauffage et filtrer une fois. | |
Bleu de méthylène |
Colorant des membranes cellulaires et du noyau |
Dissoudre 1 g de bleu de méthylène dans 1 litre d'eau distillée et bien mélanger | |
Bleu de méthylène phéniqué |
Colorant des bactéries |
Dissoudre 2 g de bleu de méthylène et 20 g de phénol dans 100 ml d'alcool à 95% | |
Carmin acétique |
Colore à chaud les chromosomes des cellules de racines de liliacées et à froid les chromosomes des cellules des parois de glandes salivaires de chironomes |
Dissoudre 0.5 g de carmin 40 pour histologie dans un mélange de 55ml d'eau distillée et 45ml d'acide acétique. Porter le tout à ébullition et laisser bouillir 1 à 2 minutes. Laisser refroidir puis filtrer. Se conserve bien à température ambiante. | |
Carmin alumé |
Colorant de la cellulose |
Dissoudre 1 g de carmin 40 pour histologie et 4 g d'alun de potassium dans 100ml d'eau distillée. Faire bouillir très doucement pendant 1/4 d'heure, laisser refroidir et filtrer. Attention la solution peut être contaminée par des moisissures. | |
Carmin vert d'iode (ou carmino vert de Mirande) |
double coloration des tissus végétaux ; rose = tissus cellulosiques ; vert = tissus lignifiés |
Dissoudre 6 g de carmin 40 pour histologie et 12 g d'alun de potassium dans 200 ml d'eau distillée. Chauffer à feu doux, ajouter 200ml d'eau distillée et 0.4 g de vert d'iode. Porter à ébullition puis laisser refroidir et filtrer. | |
Solvant pour chromatographie des glucides |
Chromatographie des sucres sur gel de silice |
60 % de méthyl-éthyl-cétone, 20 % d'acide acétique glacial, 20 % de méthanol. | |
Révélateur pour chromatographie des glucides |
Révélateur des sucres lors d'une chromatographie |
1 volume de permanganate de potassium à 2 %, 1 volume de carbonate anhydre de sodium à 4%. Mélanger les deux parties au dernier moment en n'utilisant que les quantités nécessaires | |
Solvant pour chromatographie de l'acide lactique |
Chromatographie le l'acide lactique et autres acides organiques |
butanol 1 = 1 volume additionné de bleu de bromophénol (jaune à pH<4,5), 1 g/litre de butanol acide acétique glacial : 0,5 volume eau distillée : 0,5 volume | |
Eau de chaux |
Mise en évidence de dégagement de CO2 par précipitation de carbonate de calcium |
Placer de l'hydroxyde de calcium Ca(OH)2 à saturation (plus de dissolution) dans un grand récipient contenant de l'eau déminéralisée. Boucher, agiter. On obtient du lait de chaux.Laisser décanter au moins 24h puis filtrer. Bien remplir les flacons et les boucher hermétiquement (attention à la contamination par le CO2 de l'air) | |
Eau iodée (lugol) |
Colore l'amidon se colore en bleu et le glycogène en acajou Colorations + ou - foncées en fonction de la concentration |
Dissoudre 20g d'iodure de potassium dans un peu d'eau distillée puis ajouter 10g d'iode bisublimé. Compléter à 1000 ml d'eau distillée (ajouter éventuellement un peu d'iode pour permettre la dissolution totale de l'iode). Conserver dans une bouteille en verre brun. S'utilise dilué et se décolore à la longue. | |
Eau physiologique |
Multiples usages |
9g de NaCl pour 1000ml d'eau distillée | |
Électrolyte pour sonde oxymétrique |
Remplissage des têtes de sondes type ExAO Jeulin et autres |
Na3PO4 à 30g/l soit 1,5g par flacon de 30ml | |
Empois d'amidon |
Digestion des glucides, actions des enzymes. |
Faire bouillir 80 ml d'eau distillée. Dissoudre 1 g de poudre d'amidon dans 10 ml d'eau distillée. Agiter (lait d'amidon). Verser cette suspension dans l'eau bouillante puis agiter. Poursuivre l'ébullition 1 à 2 minutes. La solution doit rester translucide et non blanche. Cette solution peut se conserver au réfrigérateur pendant plusieurs semaines. | |
Réactif de Hill |
Réaction de Hill sur des chloroplastes isolés (ExAO) |
3,29g de ferricyanure de potassium (K3[Fe(CN)6] dans 100ml d'eau distillée | |
Liquide de KNOP |
Cultures hors sol ; in-vitro Cultures d'algues |
Eau distillée :1000g Nitrate de Ca :1g Nitrate de K :0,25g Phosphate de K :0,25g Sulfate de Mg (ou sulfate de Ca) :0,25g Phosphate de fer 0,1g | |
Préparation d'une suspension de levures |
Respiration - Fermentation cellulaire -ExAO - Observation microscopique (comptage ; bourgeonnement) |
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Milieu d'extraction des mitochondries |
Milieu permettant l'extraction de mitochondries (de cœur de bœuf par ex.) en vue d'une expérimentation ExAO sur la respiration mitochondriale. |
solution A de phosphate monopotassique à 9,08g de KH2PO4 par litre, solution B de phosphate disodique à 9,47g de Na2HPO4 par litre, mélanger 322mL de la solution B et 78mL de la solution A pour obtenir 400mL de solution tampon à pH= 7,2 ajouter aux 400 mL, 800mg de Sérum Albumine bovine (S.A.B.), ajouter enfin 45g de mannitol et éventuellement 0,02 g de KCl et 0,02g de MgCl2. | |
Liquide de Ringer |
Liquide physiologique, usages multiples |
6,5g de NaCl + 0,25g de KCl + 0,12g de CaCl2 + 0,20g de NaHCO3 | |
Rouge de Crésol |
Rouge à PH neutre, il vire au jaune pour un PH < à 7.4 et au pourpre pour pour un PH supérieur à 9. |
Mélanger dans 1 L d'eau distillée (prendre de l'eau distillée du commerce ou bien la dégazer après distillation en la faisant bouillir) 0,084 g de bicarbonate de sodium ou hydrogénocarbonate de sodium; 7,46 g de chlorure de potassium; 0.01 g de poudre de rouge de Crésol. | |
Rouge Ponceau |
Colorant des bandes de gel d'électrophorèse Colorant des dépôts d'immunodiffusion |
Diluer le rouge Ponceau à raison de 13 ml pour 90 ml d'eau distillée | |
Rouge neutre |
De couleur rouge, il vire au jaune pour un PH > à 8 Colorant de la vacuole, s'utilise sur toutes les cellules végétales |
Dissoudre 1 g de rouge neutre dans 1000 ml d'eau à PH 7 (eau de Volvic). Le rouge neutre en solution ne se conserve pas longtemps et doit donc être préparé peu de temps à l'avance. | |
Rouge Soudan |
Colore les inclusions lipidiques par transfert; s'utilise sur le lait, les coupes de graines à réserves lipidiques |
Dissoudre 1 g de rouge soudan dans 100ml d'alcool à 70 %. Laisser décanter puis filtrer. | |
Solution de succinate de sodium |
Substrat pour l'étude des mitochondries |
Faire 10 mL à une concentration de 400 mmoles (acide succinique C4H6O4, PM=118 g), amener ensuite, au pH-mètre, avec de la soude à 30%, l'acide succinique à pH=7,2. si l'on dispose de succinate de sodium, faire simplement une solution de succinate à 20 g/L (contrôler le pH et l'amener éventuellement à 7,2). | |
Solution zéro |
Solution de calibrage des sondes oxymétriques |
sulfite de sodium (Na2SO3) ou hyposulfite de sodium (Na2S2SO3) en solution saturée (attention de conserver le flacon bien fermé et plein pour éviter l'oxydation) NB : ajouter au fond du flacon des billes de verre au fur et à mesure qu'il se vide | |
Tampon phosphate-saccharose |
Milieu d'extraction des chloroplastes pour la réaction de Hill (ou de mitochondries végétales) |
pour 1000 ml d'eau distillée : 171g de saccharose + 36,5g de Na2HPO4 + 16,6g de KH2PO4 | |
Tampon phosphate salin : PBS |
Lavage ou dilution des cellules ; Dilution du gel d'agar-agar (immunodiffusion) Ce tampon simule les conditions physiologiques |
pour 1000 ml d'eau distillée : 7,65g de NaCl, 0,724g de Na2PO4 et 0,210g de NaPO4 | |
Tampon Tris-veronal |
trempage des bandes cellogel à électrophorèse remplissage des cuves à électrophorèse |
Diluer le Tris Veronal à raison de 10ml pour 90 ml d'eau. La solution se conserve un mois environ au réfrigérateur et se réutilise. | |
Vert d'iode |
Colorant de la lignine, du suber et de la cutine |
Dissoudre 1 g de vert d'iode dans 100 ml d'eau distillée. | |
Vert de méthyl acétique |
Coloration des noyaux, des chromosomes et de l'ADN |
1g de vert de méthyl en poudre 55ml d'eau distillée 45ml d'acide acétique | |